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血清分離實驗哪能少的了它

發(fā)布時間:2021-3-31 18:30:55??????點擊:

  離心機被廣泛應用于血清分離實驗。

  血清蛋白主要由清蛋白和球蛋白組成,各行使其重要的功能。

  血液完全凝固和離心條件是至關重要的兩個環(huán)節(jié),離心要求采用水平式離心機。具體操作步驟是:采血后立即輕輕倒轉(zhuǎn)采血試管4~5次混勻標本,等待標本充分凝固需要放置30min,離心半徑200px,離心機離心速度維持在3500~4000r/min離心10min。血清與血凝塊完全被分離膠分離,血清標本可直接上機檢測或轉(zhuǎn)移至儀器配套試杯中。具備這個條件才能制備出高品質(zhì)血清標本,說明分離膠效果好。

  鹽析后蛋白質(zhì)沉淀經(jīng)水溶后,特點是保持蛋白質(zhì)生物學活性,因此,鹽析法是研究蛋白質(zhì)分子的結構和功能的最常用方法。除鹽析法,有機溶劑沉淀法、等電點沉淀法、柱層析法和超速離心法等也是蛋白質(zhì)分離的常用方法。

  實驗器材和試劑

  1.器材:10ml具塞刻度試管、離心機、離心管、小試管、5ml吸管、滴管2支、培養(yǎng)皿3套、醋酸纖維薄膜、點樣器、電泳槽、電泳儀、1.0×20cm層析柱。

  2.試劑:

  (1) 葡聚糖凝膠Sephadex G-25:稱10g SephadexG-25,加200ml 0.02mol/L pH6.5磷酸鹽緩沖液溶脹24小時。

  (2) 生理鹽水:稱取分析純NaCl  0.89g,蒸餾水稀釋至100ml。

  (3) 飽和硫酸銨溶液:25℃時稱取(NH4)2SO4約767g,溶解至1000ml蒸餾水中,至不能完全溶解為止,即為飽和硫酸銨溶液。

  (4) 巴比妥緩沖液(pH 8.6):稱取巴比妥鈉15.458g.巴比妥2.768g,蒸餾水定容至1000m1。

  (5) 氨基黑10B染色液:稱取氨基黑10B 0.5g,加入100ml漂洗液不斷振搖,直到完全溶解。

  (6) 漂洗液:取95%乙醇450ml,冰醋酸100m1,混勻后,用蒸餾水稀釋到l000ml。

  鹽析沉淀蛋白質(zhì):

  取10 m1具塞刻度試管1支,加入血清溶液 2.5ml,緩慢加進等量飽和(NH4)2SO4溶液,充分搖勻,見有沉淀析出,靜置10min,用雙層濾紙過濾,棄去沉淀,取濾液。

  蛋白質(zhì)分子能穩(wěn)定存在于水溶液中是因為有兩個穩(wěn)定因素:水化膜和表面電荷。當維持蛋白質(zhì)的穩(wěn)定因素破壞時,蛋白質(zhì)分子可相互聚集沉淀而析出,蛋白質(zhì)分子沉淀析出的方法很多,根據(jù)對蛋白質(zhì)穩(wěn)定因素破壞的不同有中性鹽析法、有機溶溶劑法、重金屬鹽法以及生物堿試劑法等。鹽析法是以中性鹽如硫酸銨((NH4)2SO4)等對蛋白質(zhì)作用破壞蛋白質(zhì)表面水化膜而使蛋白質(zhì)相互聚集而析出。不同的蛋白質(zhì)沉淀需要的中性鹽濃度不同,在不同鹽濃度下,蛋白質(zhì)溶解度不同。球蛋白在半飽和狀態(tài)下發(fā)生沉淀,而請蛋白在完全飽和狀態(tài)下沉淀,利用此特性可把蛋白質(zhì)分段沉淀下來,此種鹽析法稱分段鹽析。

  此次實驗注意事項:

  1、只有經(jīng)過嚴格培訓的人員才能進行離心機操作。

  2、操作時應戴手套以及眼睛和黏膜的保護裝置。

  3、規(guī)范的實驗操作技術可以避免或盡量減少噴濺和氣溶膠的產(chǎn)生。血液和血清應當小心吸取,而不能傾倒。嚴禁用口吸液。

  4、移液管使用后應完全浸入適當?shù)南疽褐小R埔汗軕谙疽褐薪葸m當?shù)臅r間,然后再丟棄或滅菌清洗后重復使用。

  5、帶有血凝塊等的廢棄標本管,在加蓋后應當放在適當?shù)姆缆┤萜鲀?nèi)高壓滅菌和/或焚燒。

  6、應備有適當?shù)南緞﹣砬逑磭姙R和溢出標本。


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